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Gracias al  desarrollo de nuevas herramientas para medir la actividad sináptica se ha podido sobrepasar importantes barreras, como es la monitorización en tiempo real del ciclo de las vesículas sinápticas. Una de estas herramientas es la sinaptofluorina (spH), una molécula resultante de la fusión de proteína fluorescente verde (GFP) sensible a pH (fluorina supereclíptica), con el dominio luminal de la proteína vesicular sinaptobrevina-2. La spH fluoresce cuando el lumen de la vesícula queda expuesto a un pH alcalino (~7.4), como es el medio extracelular. La spH deja de emitir fluorescencia a pH ácido (~5.5), como cuando la vesícula está en el citosol.

En nuestro laboratorio estudiamos el reciclado de spH en respuesta a la estimulación eléctrica del terminal nervioso de la placa neuromuscular procedentes de una línea de ratones transgénicos de spH, combinando métodos ópticos dinámicos cuantitativos en el terminal presináptico con el registro de los potenciales postsinápticos mediante registro intracelular en las fibras musculares.  

Estas técnicas nos permiten, así mismo, tener una dimensión espacial de la transmisión y comparar las propiedades de la exocitosis y la endocitosis en distintas regiones del terminal presináptico.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 


El objetivo de nuestro grupo es, así mismo, el estudio de los mecanismos patogénicos en enfermedades donde la sinapsis sufre procesos degenerativos como en la Atrofia Muscular Espinal (AME), la Atrofia Muscular Espinal con dificultad respitatoria (AMEDR), o en modelos animales geneticamente modificados (proteínas sinápticas mutadas o deleccionadas).  Para ello estudiamos con técnicas electrofisiológicas y de imagen dinámica el estado funcional de la unión neuromuscular, tanto en condiciones fisiológicas como patológicas.


 
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